REPORTE FINAL SERVICIO SOCIAL by CSKz75

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									    CENTRO DE BACHILLERATO
  TECNOLOGICO INDUSTRIAL Y DE
        SERVICIOS N° 149




     Reporte final de Servicio Social
     “LABORATORISTA CLINICO”


Alumno: Raúl Villa Arévalo

Institución: Unidad de Medicina Familiar N° 80 del
Instituto Mexicano del Seguro Social

Ubicación: Av. Madero Poniente #1200

Jefe de Laboratorio Clinico: Q.F.B. Laura A. Rocha Barajas

Periodo: 1 de Febrero 2010--31 de Julio 2010
Introducción:

En este reporte final acerca de las diversas actividades realizadas en mi
servicio social durante un periodo de 6 meses, se busca dar a conocer de
manera clara y concisa todas las distintas prácticas que se realizaron
durante este tiempo; así como las diferentes metodologías que se usan
para llevar a cabo los respectivos análisis clínicos. Cada examen de
laboratorio clínico debe ser realizado a los pacientes de forma individual,
guiándose siempre por los parámetros profesionales y éticos.
Básicamente, el trabajo en el laboratorio clínico se clasifica en tres
grandes grupos temáticos:

1. Toma de muestras.
2. Análisis de las muestras.
3. Entrega de resultados.

Por ello se debe de poner un gran esfuerzo y dedicación para todo lo que se
realice en un laboratorio clinico ya que los errores no son admisibles.
Pero estas equivocaciones pueden ser erradicadas de los laboratorios
clínicos, si se mantienen eficientes actitudes éticas, profesionales y
de procedimiento.

Justificación:

El servicio social es una actividad eminentemente formativa y de servicio,
es decir, por un lado afirma y amplía la información académica del
estudiante y, por otro, fomenta en él una conciencia de solidaridad con la
sociedad a la que pertenece.

La realización del servicio social es un requisito imprescindible para la
titulación como Técnico Laboratorista Clinico en conjunto con las prácticas
profesionales pero mi motivación mas importante es poner en practica los
bastos conocimientos adquiridos en mi escuela el Centro de Bachillerato
Tecnológico Industrial y de Servicios N° 149; por consiguiente cabe señalar
que estas actividades son muy importantes para empezar a incursionar en
el amplio mundo laboral y sus exigencias diarias. Dicho servicio social
también es un complemento importante para nuestro aprendizaje y para ir
adquiriendo practica en los diversos análisis clínicos que se pueden
realizar en un laboratorio clinico.
Periodo (meses)   Área de Laboratorio   Semana     Actividades            L   M M     J   V
♦ Febrero         HEMATOLOGIA           01/02/10   Observación     de
                                        05/02/10   modo de operación          X   X   X   X
                                                   del laboratorio

                                        08/02/10   Toma de muestras       X   X   X   X   X
                                        12/02/10
                                                   Realizar   biometría X     X   X   X   X
                                                   hematica completa
                                        15/02/10   Cuenta diferencial         X       X
                                        19/02/10   Grupos Sanguíneos              X   X   X
                                                   VSG                    X   X   X
                                        22/02/10   Toma de muestras       X   X   X   X   X
                                        26/02/10
                                                   Biometría Hematica     X   X   X   X   X
                                                   TP,TPT                         X   X   X
♦Marzo            ORINAS                01/03/10   Observar el área       X   X   X   X   X
                                        05/03/10   Toma de muestras
                                                                          X   X   X   X   X
                                        08/03/10   Toma de muestras       X   X   X   X   X
                                        12/03/10   Realizar      examen       X       X   X
                                                   general de orina
                                        15/03/10
                                        19/03/10   Reportar resultados
                                                                              X   X   X   X
                                        22/03/10
                                        26/03/10
♦Abril            INMUNOLOGIA           29/03/10   Observar el área       X   X   X   X   X
                                        02/04/10   Toma de muestras       X   X   X   X   X
                                                   Observar exámenes              X   X   X
                                                   CPS
                                        05/04/10   Toma de muestras       X   X   X   X   X
                                        09/04/10   Realizar PIE               X   X   X
                                                   Realizar CPS           X   X   X   X
                                        12/04/10   Toma de muestras       X   X   X   X   X
                                        16/04/10   Realizar FR                X   X   X   X
                                                   Realizar PIE           X   X   X   X
                                                   Realizar CPS           X   X   X
                                        19/04/10   Toma de muestras       X   X   X   X   X
                                        23/04/10   Realizar PIE           X   X   X   X
                                                   Realizar Reacciones    X   X   X   X
                                        26/04/10
                                                   febriles
                                        30/04/10
                                                   Realizar VDRL              X   X   X
                                                   Reportar resultados    X   X   X   X   X
Periodo (meses)   Área de Laboratorio   Semana     Actividades            L      M   M   J   V
♦Mayo             Preparación     de 03/05/10      Observar el área       X      X   X   X   X
                  Medios de Cultivo 07/05/10       Toma de muestras       X      X   X   X
                  (Bacteriología)                  Organizar muestras     X      X   X   X   X
                                        10/05/10   Toma de muestras       X      X   X   X
                                        14/05/10   Organizar las libretas X      X   X
                                                   Preparar medios de X          X       X
                                                   cultivo
                                        17/05/10   Toma de muestras       X      X   X   X   X
                                        21/05/10   Organizar las libretas X      X   X

                                                   Realizar Tinciones        X   X   X
                                        24/05/10   Toma de muestras          X   X   X   X   X
                                        28/05/10   Realizar tinciones        X   X   X
                                                   Preparar Medios de                X   X   X
                                                   cultivo
                                                   Organizar las libretas    X   X   X
♦ Junio           Preparación     de 31/05/10      Toma de muestras          X   X   X   X   X
                  Medios de Cultivo 04/06/10       Organizar libretas        X   X   X
                  (Bacteriología)                  Realizar Tinciones        X   X   X
                                        07/06/10   Organizar muestras        X   X   X   X   X
                                        11/06/10   Organizar libretas        X   X   X
                                                   Preparar medios de        X   X   X   X
                                                   cultivo
                                        14/06/10   Toma de muestras          X   X   X       X
                                        18/06/10   Organizar libretas        X   X   X
                                                   Realizar     inventario   X   X   X   X   X
                                                   del área
                                        21/06/10   Toma de muestras          X   X   X
                                        25/06/10   Preparar medios           X   X   X   X   X
                                                   Preparar       pruebas    X   X   X   X   X
                                                   Bioquímicas
♦ Julio           Recepción        de 28/06/10     Recepción           de    X   X   X   X   X
                  muestras;           02/07/10     muestras
                  Bacteriología                    Organización        de
                                        12/07/10   pacientes                 X   X   X   X   X
                                        16/07/10
                                                   Toma de muestras a
                                                   pacientes                     X   X   X
                                        19/07/10
                                                   discapacitados
                                        23/07/10
                                                   Realizar Urocultivo
                                        26/07/10                             X   X   X   X   X
                                        31/07/10
DESARROLLO: Practicas Realizadas;

FLEBOTOMIA (TOMA DE MUESTRA VENOSA)

La muestra debe tomarse correctamente y bajo las condiciones más favorables para
evitar errores. Esto incluye la absoluta identificación del paciente, el sitio a puncionar
y el volumen a colectar. El paciente debe estar en posición cómoda, de preferencia en
una silla especial para venopunción con descanso para los brazos y si está en cama,
preferiblemente acostado.
   Selección del sitio a puncionar:
Al proceder a seleccionar el sitio a puncionar, evite áreas con hematoma, fístulas,
quemaduras, escoriaciones de la piel o cicatrices. Si se trata de un paciente
hospitalizado evite tomar muestra de un brazo que se esté utilizando con venoclisis o
del costado en que se ha realizado una mastectomía reciente.
   La palpación:
Antes de proceder a puncionar, se debe escoger la vena. La mejor manera es
realizando una palpación de las mismas para esa decisión. Para ello coloque el
torniquete 3 a 4 pulgadas por arriba del sitio seleccionado, para visualizarlas mejor.
Debe tener presente en no mantener el torniquete por más de 3 minutos, para evitar la
hemoconcentración.
Las venas más utilizadas para la venopunción, están localizadas en el área
antecubital. Entre éstas tenemos:
   a) Vena Cubital: Es la más larga y gruesa de todas y es la preferida por bordear la
    musculatura del brazo.
   b) Vena Cefálica: Tiene iguales características de la anterior, pero es un poco
    menos gruesa.
   c) Vena Basílica: Es más pequeña que las anteriores. Esta vena está cerca de la
    arteria braquial, por lo que su punción es riesgosa y su área es más sensible y




    dolorosa para el paciente.
Al palpar hágalo con la punta de sus dedos, tratando de seguir el rastro de las venas.
Aquí también son útiles sus conocimientos en la anatomía de las venas de las
extremidades superiores. En ocasiones si no visualiza la vena, puede forzar la sangre
dentro de la vena a través de un suave masaje de abajo hacia arriba.
                             PALPACIÓN DE LAS VENAS




   La Descontaminación:
Una vez que se ha decidido por la vena a puncionar, debe proceder a descontaminar
el área con alcohol etílico o isopropílico al 70% utilizando algodón y con movimientos
circulares del interior al exterior. Debe tener presente que una vez realizada la
descontaminación, no debe volver a tocar el área venosa.
                              DESINFECCION DEL AREA




   La punción venosa:
Ahora está preparado para realizar la extracción sanguínea.
El brazo debe estar preferiblemente en posición cómoda horizontalmente. Con el
torniquete en posición, haga que el paciente cierre y abra el puño de 3 a 5 veces para
bombear mejor la sangre, y luego que mantenga el puño cerrado.
Si se trata de un niño, es recomendable colocar 2 dedos de la mano, debajo del codo
del paciente, para evitar que doble el brazo durante la extracción.
   Tubos de colección: Los tubos están predeterminados para llenarse con un
    determinado volumen de sangre por vacío. El tapón de caucho está codificado
    por color, de acuerdo a su uso o sus aditivos.
                                     TUBO CON TAPON ROJO
USO: Química, Inmunología, Banco de sangre
ADITIVO: Ninguno




                                     TUBO CON TAPON ROJO
USO: Química
ADITIVO: Gel - Separador




                                   TUBO CON TAPON MORADO
USO: Hematología
ADITIVO: Anticoagulante EDTA




                                   TUBO CON TAPON CELESTE
USO: Pruebas de Coagulación
ADITIVO: Anticoagulante Citrato de sodio
♦BIOMETRIA HEMATICA COMPLETA

La Biometría Hematica también denominada Hemograma, es uno de los estudios de rutina de mayor
importancia, ya que la información que de aquí se deriva nos proporciona una idea muy confiable del
estado general de la salud del paciente, consta de 2 bloques:

  Formula Roja: Determina los parámetros relacionados con el eritrocito.

  Formula Blanca: Determina los parámetros relacionados con los leucocitos.

  Formula Roja: La determinación de la fórmula roja se compone de los siguientes parámetros:

A. Hematocrito (Ht): Es el porcentaje de la sangre que está compuesta por eritrocitos.

B. Hemoglobina (Hb): Es determinada la cantidad de esta proteína expresada en g. /dl.

C. Conteo eritrocítico (Eri): Es la cantidad total de eritrocitos circulantes por microlitro de sangre.
MÉTODOLOGIA:

            o   Obtuvimos sangre de un voluntario

            o   Se coloco en el tubo de ensaye con anticoagulante

            o   Después se tomo una parte y se coloco en el tubo de Wintrobe y se llevo a la gradilla

            o   Se obtuvo con esto la velocidad de sedimentación eritrocitaria

            o   Después para obtener el recuento total de eritrocitos se tomo otro poco de sangre y
                se aspiro con una boquilla en la pipeta de Thoma

            o   Se le agrego solución salina isotrópica.

            o   Se agito y se depositaron 2 gotas en la cámara de Neubauer

            o   Se llevo a microscopio y se contó por cuadrantes el número de eritrocitos.

            o   Se toma la muestra en capilares para obtener el nivel de hematocrito

            o   Por decantación se coloca en los capilares y se lleva a la microcentrifuga

            o   Con la pipeta de Shalli se obtiene la determinación de hemoglobina

            o   El estudio morfológico se realizó por medio de un frotis

            o   Se toma una o dos gotas de sangre y se colocan en un extremo del portaobjetos y
                con otro se extiende

            o   Se lleva al microscopio y se observa, en los objetivos más pequeños primero y por
                último en el de 100x, colocando previamente aceite de inmersión

            o   Se lleva la cuenta de los tipos de células en la sangre hasta alcanzar un total de 100

*Este procedimiento es manual, cabe señalar que en laboratorio se cuenta con un
equipo automatizado de marca Nihon Koden™; por lo que solo la cuenta
diferencial se rectificaba manualmente.

♦CUENTA LEUCOCITARIA DIFERENCIAL

Fundamento:

Se realizará este proceso en caso de existir normoblastos (eritrocitos nucleados) en la
cuenta leucocitaria

Por este proceso se podrá decir cuantos normoblastos hay por cada 100 leucocitos.
Ejemplo:

Si hay 28 normoblastos por cada 100 leucocitos se aplica la siguiente relación:

128 - 100
12000 -- x

x = 9375 leucocitos

La cuenta leucocitaria diferencial es el conteo del número de los distintos tipos de
leucocitos. Identifica a los individuos con una mayor susceptibilidad a la infección.




Técnica:

La cuenta leucocitaria total circulante se divide en 5 tipos de leucocitos:

-neutrófilos (en banda y segmentados). Su citoplasma es incoloro y tiene múltiples granos
color gris; o puede ser multilobulado, que posee cuatro lóbulos nucleares.

-eosinófilos: es redondo u ovalado, el núcleo posee no más de tres lóbulos y en el
citoplasma se observa no mas de 20 granos color naranja.

-Basofilos: se caracterizan por sus grandes granulaciones azul oscuro. Estos gránulos son
hidrosolubles.

-linfocitos: Su citoplasma es azul pálido y la cromatina nuclear color púrpura azulado
oscuro; casi no posee citoplasma.

-monocitos: su núcleo suele ser arriñonado. Contiene una red de cromatina. El citoplasma
se tiñe de un color azul grisáceo y contiene finas granulaciones color rosa.




Valores de referencia:

Neutrófilos:

-en banda 0-11%
-segmentados 25-62%

Eosinófilos: 0-2%

Basofilos: 0-1%

Linfocitos: 25-40%

Monocitos: 3-12%

*Tinción de Wright

La acción combinada de estos colorantes produce el efecto Romanowsky y da una
coloración púrpura a los núcleos de los leucocitos y a los gránulos neutrofílicos y de color
rosado a los eritrocitos. Los componentes de este efecto son el azul B y la eosina Y. Los
agrupamientos de ácidos nucleicos, las proteínas de los núcleos celulares y el citoplasma
inmaduro reactivo, fijan el azul B, colorante básico

La eosina Y, colorante ácido, se fija a los agrupamientos básicos de las moléculas de
hemoglobina y a las proteínas básicas.

Material:

      Frotis sanguíneo

       Agua destilada

      Colorante de Wright
      Solución Buffer
      Microscopio

Procedimiento:

1.- Hacer un frotis sanguíneo, ni demasiado delgado, ni que llegue al extremo del
portaobjetos.
2.- Dejar secar el frotis a temperatura ambiente




3.- Sumergir el portaobjetos en el reactivo de Wright, durante 5 o 6 minutos aprox.




4.- Lavar con Buffer 7.2 y sacudir para eliminar exceso

6.- Lavar con agua destilada y dejar secar

7.- Observar al microscopio
♦ DETERMINACION DE GRUPOS SANGUINEOS SISTEMA ABO

Introducción:

Grupo Sanguíneo.

Los grupos sanguíneos son una forma de clasificar los tipos de sangre dependiendo de las
características que poseen los eritrocitos estas son los diferentes tipos de antígenos (Ag)
que presentan en su superficie y los anticuerpos (Ab) que tienen en el suero, también por
el factor Rh; Estos grupos son cuatro según la clasificación que hizo Karl Landsteiner a
principios del s. XX después fue premiado por el premio nobel de medicina en 1930 por sus
trabajos sobre la caracterización de los grupos sanguíneos ABO. Estos grupos se
caracterizan por las diferentes combinaciones de dos aglutinógenos existentes en los
glóbulos rojos y de dos aglutininas contenidas en el suero.

Constitución del Sistema ABO.

Landsteiner definió este sistema a partir de las variaciones específicas que cada uno de
los grupos presenta sobre los glicanos de las proteínas y los lípidos.

Sus antígenos no solo se encuentran sobre los eritrocitos sino que también en la mayor
parte de nuestros tejidos corporales, por lo que seles clasifico como antígenos de
histocompatibilidad

Estructura de los grupos sanguíneos ABO.

El sistema ABO. Pese varias variantes, dichas variantes comparten una estructura común
llamada Idquo; Hrdquo; los individuos del grupo O solo presentan una estructura H intacta,
a diferencia de los individuos del grupo A o B que presentan modificaciones distintivas; el
grupo A presenta una presenta una adición de un monosacárido terminal llamado N-acetil-
galactosamina (GalNAc) a la estructura H, formando así el antígeno A. al grupo B se
caracteriza por la adición de un monosacárido terminal llamado Galactosa (gal) a la
misma estructura H, formando así el antígeno B. El grupo AB realiza ambas modificaciones
por lo que expresa ambos antígenos.




La clasificación se basa en los antígenos dela membrana celular y los anticuerpos del
suero como se muestra en esta imagen.
Metodología.

Se realizo una determinación de grupos ABO en placa (reacción de aglutinación antígeno-
anticuerpo) con los reactivos correspondientes:

       Anti A marca Novaclon Murine monoclonal, lote: nao8805
       Anti B marca Novaclon Murine monoclonal, lote: nbo9403




♦ EXAMEN GENERAL DE ORINA

EXÁMEN FÍSICO:

Aspecto: Es considerado como normal un aspecto transparente, pero es aceptado hasta
un aspecto ligeramente turbio ya que este puede ser debido a contaminaciones.
El aspecto de una orina turbia ya es considerado como anormal, esto puede ser debido a
presencia de leucocitos, glóbulos rojos, bacterias, cristales, grasa (Por obstrucción de
linfáticos).

Color: En condiciones normales el color de la orina va de amarillo hasta ámbar. Se pueden
encontrar colores anormales debido a la presencia de elementos anormales en la orina
como por ejemplo sangre, medicamentos, alimentos y otros pigmentos.

Incolora: se conoce como HIDRURICA característica de una diabetes insípida se presenta
por baja en la producción de Hormona antidiurética.

Rosado o Rojo: Se presenta por la presencia aumentada de Urobilinogeno,
porfobilinogeno.

Azul: después de procesos quirúrgicos.

Amarillo intenso: pigmentos biliares.
Negro: melanomas productores de melanina.

pH: Es el reflejo de la capacidad del riñón para mantener la concentración normal de
hidrogeniones. El pH normal va de 5.5 - 6.5. Influyendo el régimen dietético el cada
paciente.
En una alcalosis metabólica y respiratoria se produce una orina alcalina mientras que en
una acidosis se produce una orina ácida.

Densidad: Esta varia en razón directa a la cantidad de sólidos, principalmente cloruros,
urea, sulfatos, la densidad normal va de 1.015 - 1.025.

EXAMEN QUÍMICO:

Este examen se hace por medio de una tira reactiva producida por diferentes casas
comerciales.

Proteínas: Se pueden encontrar varias clases de proteínas pero la más importante es la
albúmina. Hay proteinurias llamadas fisiológicas asociadas a fiebres, exposición al
frío, stress emocional, ejercicio intenso.
Hemoglobina: Es una proteína sanguínea que no se debe encontrar en orinas normales, su
presencia puede ser causada por procesos hemolíticos, agentes
tóxicos, accidentes transfusionales, quemaduras, etc. Fisiológicamente puede
presentarse por ejercicio intenso. La presencia de hemoglobina y proteínas ambas altas
indican que hay un daño glomerular.
Glucosa: En condiciones normales se elimina por la orina cantidades no detectables por
los métodos usuales, cuando el nivel de glucosa sobrepasa el umbral renal (180 mg/dl) se
detecta. En el síndrome de cushing se presentan glucosurias.
Cetonas: Cuando el metabolismo hepático se acelera por carencia de glucósidos, exceso
de grasas o en diabetes, los cuerpos cetónicos aparecen en abundancia en la orina y
sangre. La prueba se basa en la reacción del ácido acetoacetico con el nitraprusiato.
La presencia aumentada de cetonas y glucosa se presenta en una acidosis diabética.
Bilirrubina y Urobilinogeno: La bilirrubina es un producto resultante de la descomposición
de hemoglobina. Normalmente no se encuentra, su eliminación se presenta por ictericia
obstructiva intra y extrahepatica aguda o crónica, cirrosis. En Colestasis se presenta
aumento de bilirrubinas con un Urobilinogeno normal, en ictericias hepáticas se presenta
aumento de bilirrubinas menor que en las Colestasis con un Urobilinogeno aumentado o
normal, en las ictericias producidas por anemias hemolíticas se presenta una bilirrubina
normal con un Urobilinogeno aumentado.
Nitritos: Se deben analizar en orinas recién emitidas para que su valor tenga algún
significado clínico.

EXAMEN MICROSCÓPICO:

El examen microscópico del sedimento urinario no solo evidencia una enfermedad renal,
sino también indica la clase de lesión presente.

Leucocitos: Indican una pielonefritis, también se encuentran en enfermedades
autoinmunes, lesión en vía renal o infecciones cerca al aparato urinario. Se debe tener en
cuenta si la muestra esta contaminada principalmente en mujeres en este caso
el informe de laboratorio se debe reportar como: Contaminación vaginal, se siguiere
recoger nueva muestra previo aseo y micciónmedia.
Hematíes: Indican sangrado a nivel de vías urinarias. Se debe mirar si los hematíes son
intactos los que son hematurias bajas, crenados que se observan en orinas hipertónicas,
hematíes dimorfos que indican una hematuria glomerular.
Células epiteliales: Se pueden encontrar algunas células en la orina como consecuencia
del desprendimiento normal de las células envejecidas. Un marcado aumento puede
indicar inflamación del conducto del tracto urinario.
Los cuerpos ovales son células epiteliales redondas llenas de grasa que se observan en
nefrosis debido a perdida de proteínas.

CILINDROS: Se forman en la luz del túbulo renal, cuando las proteínas se precipitan
originando un gel.




♦ EXAMEN COPROPARASITOSCOPICO (CPS)

EXAMEN MICROSCÓPICO:

En una lámina portaobjetos se colocan dos gotas, en la parte izquierda solución salina y en
la derecha lugol, luego se toma con un palillo la muestra de materia fecal, se debe escoger
la parte que tenga elementos anormales como sangre, moco, etc. y de otra parte para que
así quede una muestra representativa, se homogeniza en la lámina primero en la solución
salina y luego en el lugol, se le colocan los cubreobjetos. La suspensión no debe quedar
muy gruesa pero tampoco muy delgada.

Residuos alimenticios: Fibras musculares: Se presentan en forma de cilindros con estrías
longitudinales y transversales.
Grasas neutras: Aparecen como esferas refringentes de diferentes tamaños.
Ácidos grasos: Se observan como agujas incoloras.
Almidones: Tienen formas irregulares y son retractiles al agregar el lugol.
Fibras vegetales: Se caracterizan por ser de doble pared, contienen clorofila y poseen un
canal central muy marcado.

Productos de irritación de la mucosa: Moco: Se observa en cualquier patología.
Glóbulos Rojos: Su hallazgo indica lesión en la parte baja del aparato digestivo.
Células epiteliales: Indican una excesiva irritabilidad.
Bacterias: Carecen de significación clínica.
Leucocitos: Si hay gran cantidad indica irritación bacteriana.
Cristales de Charcot-leyden: Se ven en forma de rombos alargados.

EXAMEN PARASITOLÓGICO:

NEMATODOS: Gusanos redondos
Áscaris lumbricoides: Se observan huevos miden aprox. 45-75 x 30-50 mm, presenta una
célula rodeada por tres capas, producen una patología de dolor de estomago y
desnutrición.

Tricocéfalo: El huevo mide de 50-55 x 22-25 mm Tiene la forma
de balón de fútbol americano, produce anemia intensa, dolores abdominales, prolapso
rectal ocasional.

Uncinarias: Tienen una forma elíptica, están cubiertas de una membrana lisa, transparente
y fina, mide de 60 - 40 x mm producen anemia.

Strongyloides stercolaris: Se observan larvas. Produce diarrea, vomito, desnutrición.

Enterobius vermiculares (Oxyurus): Los huevos son ovoides con una cara convexa y una
plana, presenta una membrana interna y delicada y otra gruesa hialina y mamelonada,
mide de 50-60 x 20-30 mm. Produce prurito en la región perianal, insomnio, cambios de
conducta.

CESTODOS: Gusanos planos

-Taenia: Los huevos miden 20-30 x 30-40 mm, son ovoides con membrana gruesa,
amarillenta que se encuentra estriada en forma de empalizada y encierra un embrión de
seis ganchos poco visibles. Produce trastornos nerviosos.
- Hymenolepis nana : Huevos ovoides, mide aprox. 50 mm tiene una membrana interna y
una externa, también puede causar trastornos nerviosos.

PROTOZOARIOS: Amebas

Entamoeba histolítica: Se observan quistes miden aprox. 20 mm se observa con cuatro
núcleos. Pueden causar lesión de la mucosa intestinal.

Entamoeba coli: Son quistes más grandes que los de histolítica, tiene más de cuatro
núcleos. Es considerada cono NO patógena.

Endolimax nana: Los quistes son ovalados miden de 6 - 10 mm presentan de uno a cuatro
núcleos.

Iodamoeba bütschlii: Su quiste se caracteriza por la presencia de una vacuola de yodo, no
es una ameba patógena.
♦ REACCIONES FEBRILES
Son un grupo de pruebas de aglutinación que investigan la presencia en el suero del
paciente, de anticuerpos contra cepas bacterianas patógenas que causan la fiebre de
tifoidea, paratifoidea y brucelosis. Se trata de una reacción de aglutinación donde los
anticuerpos actúan sobre los antígenos bacilares. Un simple ejemplo es proporcionado
por la respuesta de los anticuerpos (Ab) a la infección por bacterias flageladas. Los
anticuerpos pueden estar dirigidos contra la superficie flagelada antigénica, los antígenos
somáticos o ambos. El tipo de aglutinación macroscópica también puede ser distintivo; así
como el complejo flagelar antígeno-anticuerpo se muestra grueso y floculento, en forma de
copos, mientras el complejo somático aparece fino y granuloso. 1 En la actualidad ya
existen soluciones de los antígenos bacterianos ya preparadas como:

• Antígeno “O” (somático) de Salmonella typhi

• Antígeno “H” (flagelar) de Salmonella paratyphi

• Antígeno flagelar de S. Paratyphi “A”

• Antígeno flagelar de S. Paratyphi “B” (b, 1 y 2)

• Antígeno completo de Brucella abortus (Br)




♦REALIZAR TINCION GRAM

Objetivo; Que los alumnos aprendan a diferenciar los tipos de bacterias en que se
clasifican de acuerdo a su reacción con la tinción de gram. Y que se aprenda a hacer la
aplicación de los colorantes usados en la tinción de gram.



Introducción; La tinción de gram es usada para clasificar bacterias sobre la base sus
formas, tamaños, morfología celulares y reacción a la tinción de gram (color). A nivel del

1
 Jawetz, E.; Melnick, J; Adelberg, E;. Manual de Microbiología Médica. Ed. El manual moderno S.A.
Séptima edición. 1991 pag. 160-164
laboratorio es útil como test para un rápido diagnostico presuntivo de agentes infecciosos,
tanto en muestras como en cultivos en crecimiento, y adicionalmente sirve para valorar la
calidad de la muestra clínica. Las bacterias se tiñen gram positivas (+), gram negativas (-)
o no se tiñen debido a sus diferencias en la composición de su pared y arquitectura
celular.

Las bacterias gram (+) tienen una gruesa capa de peptidoglucano y gran cantidad de
ácidos teicóicos que no son afectados por la decoloración con alcohol cetona, reteniendo
el colorante inicial acomplejado con iodo y visualizándose en distintos tonos desde el
violeta azul claro, dependiendo de si la naturaleza de su pared celular esta intacta o
dañada.

Las Bacterias gram (-) tienen en su pared celular una delgada capa de peptidoglucano
ligada a una membrana externa por moléculas de lipopolisacaridos. Esta membrana
externa es dañada por el alcohol cetona de la decoloración, permitiendo que el primer
colorante acomplejado con iodo escape y sea reemplazado por el contra colorante.

Clásicamente los reactivos utilizados para la realización de la tinción de gram han sido; el
cristal violeta como colorante inicial, la solución de iodo lugol para acomplejar a este, el
alcohol cetona para la decoloración y la safranina como contra colorante.




Técnicas o metodologías:

              Primero procedemos a tomar un exudado faríngeo con el hisopo a uno de
              los compañeros, mientras colocamos el puente de vidrio encima del
              recipiente con una gota de agua encima y ahí frotamos el hisopo y dejamos
              secar.
Una vez seco aplicamos el cristal violeta por un minuto y medio e inclinamos
sobre el recipiente.




Después se aplico iodo lugol por un minuto y medio más e inclinamos.
Enjuagamos con alcohol cetona hasta que dejara de salir violeta de
genciana y que reposara por 1.5 minutos.




                  Para finalizar aplicamos safranina e inclinamos el porta
                  hasta que se secara completamente.
       Una vez seco se observo en el microscopio;




♦PREPARACION DE MEDIOS DE CULTIVO

Introducción; Un método fundamental para estudiar las bacterias es cultivarlas en un
medio líquido o en la superficie de un medio sólido de agar. Los medios de cultivo
contienen distintos nutrientes que van, desde azúcares simples hasta sustancias
complejas como la sangre o el extracto de caldo de carne. Para aislar o purificar una
especie bacteriana a partir de una muestra formada por muchos tipos de bacterias, se
siembra en un medio de cultivo sólido donde las células que se multiplican no cambian de
localización; tras muchos ciclos reproductivos, cada bacteria individual genera por
escisión binaria una colonia macroscópica compuesta por decenas de millones de células
similares a la original. Si esta colonia individual se siembra a su vez en un nuevo medio
crecerá como cultivo puro de un solo tipo de bacteria. Muchas especies bacterianas son
tan parecidas morfológicamente que es imposible diferenciarlas sólo con el uso del
microscopio; en este caso, para identificar cada tipo de bacteria, se estudian sus
características bioquímicas sembrándolas en medios de cultivo especiales. Así, algunos
medios contienen un producto que inhibe el crecimiento de la mayoría de las especies
bacterianas, pero no la de un tipo que deseamos averiguar si está presente. Otras veces el
medio de cultivo contiene determinados azúcares especiales que sólo pueden utilizar
algunas bacterias. En algunos medios se añaden indicadores de pH que cambian de color
cuando uno de los nutrientes del medio es fermentado y se generan catabolitos ácidos. Si
las bacterias son capaces de producir fermentación, generan gases que pueden ser
apreciados cuando el cultivo se realiza en un tubo cerrado. Con otros medios de cultivo se
identifica si las bacterias producen determinadas enzimas que digieren los nutrientes: así,
algunas bacterias con enzimas hemolíticas (capaces de romper los glóbulos rojos)
producen hemólisis y cambios apreciables macroscópicamente en las placas de agar-
sangre. Los diferentes medios y técnicas de cultivo son esenciales en el laboratorio de
microbiología de un hospital, pues sirven para identificar las bacterias causantes de las
enfermedades infecciosas y los antibióticos a los que son sensibles esas bacterias.

♦Técnicas o metodologías.

Se observo que la caja DE AGAR MUELLER HINTON decía 1litro de agua para 38grs. De
agar

Realizamos una regla de tres.


                 Medio de cultivo Agua destilada
                     38 gr          1000 ml
                      X gr           70 ml
              X 
                    38    gr 70 ml  2660 gr ml
                                                   2.70 gr
                          1000 ml        1 000 ml




       Pesamos los 2.7grs. En la balanza granataria.




       Medimos los 70ml. de agua con ayuda de la probeta. Después vaciamos la gelatina
en el matraz.
   Pusimos a disolver con ayuda del mechero.




Una vez listo sellamos con cinta testigo alrededor del matraz.




   Procedimos a esterilizar en la autoclave a 15 libras por 15 min.
Una vez estéril (nos dimos cuenta por el color de la cinta testigo).
Procedimos a vaciar los medios en las cajas de petri.




         Bibliografía:
            http://www.who.int/features/2008/blood_journey/blood_slide04.jpg
            http://www.semanasalud.ua.es/semana_3/elgrupo.htm#¿QUÉ%20ES%20EL%20GRU
            PO%20SANGUÍNEO? http://themedicalbiochemistrypage.org/spanish/glycoproteins-
            sp.html&usg2008.http://es.wikipedia.org/wiki/Grupos_sangu%C3%ADneos

http://www.3tres3.com/ _img/650_4509230-gran.com

http://www.who.int/features/2008/blood_slide04.jpg

http:/es.wikipedia.org/wiki/Grupos_sangu%C3%ADneos
CONCLUSIONES:

El Laboratorista Clínico es un técnico capacitado para obtener los diferentes tipos
de muestras biológicas, procesarlas, analizarlas y reportar los resultados en las
áreas de: Parasitología, Bacteriología, Hematología, Inmunología y Química
Clínica, para detectar las diferentes alteraciones patológicas, bajo un estricto
control de calidad, actuando con ética profesional, respetando la normatividad
vigente en materia de salud y ambiental.
El técnico laboratorista clínico es un técnico capaz de realizar y dirigir los
procesos relacionados con el análisis clínico, con un criterio técnico, económico,
social y humanístico; encaminado a lograr una mayor eficiencia y
aprovechamiento del equipo y material. Y ahora después de haber realizado el
servicio social me siento capaz de cumplir con las expectativas de un laboratorista
clinico. Ya que aprendí y puse en practica mis conocimientos y me voy preparando
para el cada vez mas competitivo mundo laboral.

								
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